產(chǎn)品簡介:
?本產(chǎn)品與傳統(tǒng)質(zhì)粒提取方法比較,具有以下特點:
技術(shù)先進——采用獨特 的疏水膜技術(shù),有效地去除各種蛋白質(zhì)和大部分 RNA;
使用安全——這是一個沒有有機溶液污染的操作過程.
質(zhì)量可靠——提取所得的質(zhì)粒純度高;
組份
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BKM-ZL-X50(50次)
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Mini Column
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50
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2 ml Collection Tube
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50
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Buffer K1 (Cell resuspension solution)
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15 ml
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Buffer K2 (Cell Lysis solution)
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15ml
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Buffer K3 (Neutralization solution)
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20ml
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Buffer KW (Wash solution )
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使用前加入無水乙醇 50 ml
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Buffer KE (Elution solution)
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15ml
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使用說明:
1. 實驗前準備工作:詳細閱讀該手冊熟悉各步驟,并準備好所有的試劑盒組分,2 ml 離心管以及 65 ℃的溫浴條件。
2. Buffer KW 第一次使用前請按瓶上標簽加入 50 ml 無水乙醇。每次使用后,請立即擰緊蓋子。
3. K2 在低溫下可能會產(chǎn)生沉淀,可在 37 ℃溫育數(shù)分鐘待溶液澄清后即可使用。因 K2 中含有堿性成分,為減少被空氣中 CO2 中和,請使用后立刻擰緊蓋子。K3 使用前請預冷至 4 ℃。
4.加入 K2 和 K3 后的顛倒混勻的動作一定要輕柔,否則會影響質(zhì)粒質(zhì)量。加入 K3 后的離心條件最好是 4 ℃,其他離心條件室溫即可。
操作步驟:
1. 取1.5-5.0ml 過夜培養(yǎng)的菌液,加入一新的 2ml 離心管中,室溫 6000 rpm 離心 5 min 沉淀菌體。棄上清液。
注意:盡量將上清液倒干凈,最后可倒扣于吸水紙上吸干殘余上清液。
2. 向管中加入 250 μl Buffer K1,劇烈震蕩細菌沉淀,將菌體完全打散。
注意:確保菌體沉淀完全散開,無可見細菌團塊,否則會降低質(zhì)粒的產(chǎn)量。
3. 向管中加入 250 μl Buffer K2,輕輕顛倒混勻 5-10 次。室溫靜置 2-5 min。
注意:1)顛倒的動作要輕柔,切勿劇烈震蕩,且裂解時間不宜超過5 min,否則會導致基因組DNA斷裂污染質(zhì)粒。
2)當使用完 Buffer K2 以后,須蓋緊瓶蓋保存于室溫,避免與空氣中的 CO2 反應。
4.向管中加入350μl Buffer K3(可以預冷至4 ℃,也可以在常溫),并溫和地上下顛倒離心管10-20 次,直至形成白色絮狀沉淀。
5. 在4 ℃,12000 rpm 以上離心10 min,或者常溫12000 rpm 離心3-4 min。
注意:提高離心速度和時間有利于沉淀貼壁更加緊密,但是常溫下不宜離心時間過長,否則會使液體溫度升高,造成質(zhì)粒 DNA 降解。
6.小心將細胞離心的上清液轉(zhuǎn)至吸附柱子內(nèi),室溫 12000 rpm 離心 30s,使裂解液完全流過柱子。棄去收集管中的過濾液。
7. 把柱子重新裝入 2 ml 收集管中,加入 700 μl Buffer KW 至柱子,室溫 12 000 rpm 離心 1 min,棄去洗滌液。
注意:KW 在使用之前必須加入 50 ml 95%或者無水乙醇。Buffer KW 應置于室溫下。
8.(可選)重復用 700 μl 70%乙醇(室溫)洗滌柱子。室溫 12 000 rpm 離心 1 min。
9. 棄收集管中的濾液,將空柱子套回 2 ml 收集管內(nèi)。室溫下,最高轉(zhuǎn)速或者 13 000 rpm 離心 2 min 以甩干柱子基質(zhì)殘余的液體。
注意:此步驟不可省,否則將導致乙醇殘留于 DNA 中,影響后續(xù)反應。
10. 把柱子裝在一個干凈的 1.5 ml 離心管上,加入50μl Buffer KE (可用滅菌的 TE 10 mM Tris-HCl,pH 8.0 或純水代替,純水可預先用 NaOH 調(diào) pH 值至 8.0)到柱基質(zhì)膜的中央,室溫放置 1-5 min,13000 rpm 離心 1 min 以洗脫 DNA。
注意:1)Buffer KE在65 ℃預熱或者加入后放置時間稍長,對于增加質(zhì)粒產(chǎn)量會有幫助。
2)第一次洗脫可以洗脫出膜上80%左右的DNA。如果用30 μl Buffer KE再洗脫一次,可以把殘余的DNA洗脫出來,但是會降低質(zhì)粒的純度(不推薦)。
注意事項:
?如不慎接觸皮膚可立即用大量的洗滌劑和清水清洗。
?為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴 一次性手套操作。